Научно-издательская деятельность, книги

ГК «Агролига России» сотрудничает с профильными высшими учебными заведениями, учеными и авторами по всей стране, издавая книги по тематике растениеводства различных сельскохозяйственных культур. Наши книги серии «Современное сельское хозяйство России» стали настоящими бестселлерами. Они нашли благодарных читателей в лице руководителей и специалистов АПК, ученых, студентов и преподавателей высших учебных заведений.

Серия «Современное сельское хозяйство» на сегодняшний день насчитывает 5 изданий, куда вошли следующие книги:

• «Пивоваренный ячмень России» — Федотов, В.А., Гончаров С.В., Рубцов А.Н., 2006 г.
• «Рапс России» — Федотов, В.А., Гончаров С.В., Савенков В.П., 2008 г.
• «Соя в России» — Федотов, В.А., Гончаров С.В., Столяров О.В., Ващенко Т.Г., Шевченко Н.С., 2013 г.
• «Атлас-справочник основных вредителей и болезней ягодных культур и мер борьбы с ними» — Зейналов А.С., 2016 г.
• «Основные вредители и болезни плодовых культур и системы мероприятий по ограничению их вредоносности» — Зейналов А.С., 2018 г.

Вы можете приобрести следующие книги, обратившись в ближайшее к Вам подразделение ГК «Агролига России»:

Атлас-справочник основных вредителей и болезней ягодных культур и мер борьбы с ними

В книге обобщены результаты многолетних научных исследований автора по изучению вредных организмов ягодных культур. Приведены описания морфологических, биологических и экологических особенностей развития наиболее опасных фитофагов и патогенов, симптомы повреждения и поражения ими ягодных растений. Указаны индивидуальные меры борьбы с отдельными вредителями и болезнями, а также комплекс защитных мероприятий как на крупных производственных насаждениях, так и на небольших приусадебных и фермерских хозяйствах. Подробно описаны системы мониторинга вредных организмов, сроки и методы их учета на каждой культуре, экономические пороги вредоносности (ЭПВ), подбор препаратов в борьбе с конкретными фитофагами и патогенами в соответствующие периоды развития, с учетом достижений современной отечественной и мировой сельскохозяйственной науки. Книга иллюстрирована многочисленными оригинальными фотографиями вредных объектов и характера повреждения и поражения ими растений, что поможет при их идентификации и определении необходимых способов и методов защиты. Она предназначена для сотрудников научных организаций, специалистов по защите растений, широкого круга работников, связанных с ягодоводством, преподавателей и студентов высших учебных заведений, фермеров, садоводов-любителей.

Зейналов Адалет Сехраб оглы – доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководства» (ФГБНУ ВСТИСП). Специалист в области защиты растений и паразитологии. Автор 170 научных работ, в том числе более 10 книг, монографий, методических указаний и рекомендаций, 5 патентов на изобретения по экологически чистым способам защиты садовых растений от вредных организмов и 1 авторского свидетельства. Его монография «Экологически безопасная защита основных ягодных культур от членистоногих фитофагов» и подготовленные с коллегами методические рекомендации «Ресурсосберегающие экологически обоснованные системы защиты ягодных культур от вредителей и болезней» были награждены дипломом Президиума Российской Академии Сельскохозяйственных Наук за лучшую завершенную научную разработку 2013 года в области АПК России. Работает в ФГБНУ ВСТИСП с 1989 г. (ранее НИЗИСНП Научно- исследовательский зональный институт садоводства Нечерноземной полосы).

Дата выпуска:	2016
Кол-во страниц:	240
Переплет:	Твердый
Плотность бумаги:	105 мел.
Формат:	60×90/16 (145×215)

ГЛАВА 1. ВРЕДИТЕЛИ СМОРОДИНЫ И КРЫЖОВНИКА

Тли-фитофаги смородины и крыжовника
Кокциды (червецы, ложнощитовки, щитовки)
Акациевая ложнощитовка
Ивовая щитовка
Кленовый мучнистый червец
Клопы
Смородиновая стеклянница
Крыжовниковая огневка
Листовертки-фитофаги ягодных культур
Розанная листовертка
Смородинная кривоусая листовертка
Смородинная почковая моль
Пяденицы-фитофаги смородины и крыжовника
Пилильщики
Черносмородинный ягодный (плодовый) пилильщик
Листовые пилильщики
Черносмородинная листовая галлица
Черносмородинная побеговая (стеблевая) галлица
Цветочная (бутонная) галлица
Почковые клещи
Смородинный листовой ребристый клещ
Паутинные клещи

ГЛАВА 2. БОЛЕЗНИ СМОРОДИНЫ И КРЫЖОВНИКА

Американская мучнистая роса крыжовника
Антракноз (мухосед)
Септориоз (белая пятнистость)
Столбчатая ржавчина
Реверсия
Рябуха

ГЛАВА 3. ВРЕДИТЕЛИ ЗЕМЛЯНИКИ И МАЛИНЫ

Тля малинная побеговая
Тля малинная листовая
Малинно-земляничный долгоносик-цветоед
Малинный жук
Листовертки
Листовертка клубничная
Листовертка земляничная
Малинная стеблевая галлица
Синдром отмирания (ломкости) стеблей малины
Земляничный (прозрачный) клещ
Паутинные клещи на землянике
Паутинные клещи на малине
Малинный листовой-почковый клещ
Стеблевая нематода на землянике садовой

ГЛАВА 4. БОЛЕЗНИ ЗЕМЛЯНИКИ И МАЛИНЫ

Белая пятнистость земляники
Бурая пятнистость земляники
Мучнистая роса земляники
Серая гниль земляники
Антракноз малины
Дидимелла, или пурпуровая пятнистость малины
Септориоз, или белая пятнистость малины
Израстание малины

ГЛАВА 5. ПОТЕНЦИАЛЬНО ОПАСНЫЕ И ОГРАНИЧЕННО РАСПРОСТРАНЕННЫЕ ВРЕДНЫЕ ОРГАНИЗМЫ ЯГОДНЫХ КУЛЬТУР

ГЛАВА 6. СИСТЕМЫ МОНИТОРИНГА ВРЕДНЫХ ОРГАНИЗМОВ ЯГОДНЫХ КУЛЬТУР

ГЛАВА 7. СИСТЕМЫ ЗАЩИТЫ ЯГОДНЫХ КУЛЬТУР ОТ ВРЕДНЫХ ОРГАНИЗМОВ

ПРИЛОЖЕНИЕ 1. ПОВЫШЕНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ ХИМИЧЕСКИХ ОБРАБОТОК ЯГОДНЫХ КУЛЬТУР И ОРГАНИЧЕСКИЕ УДОБРЕНИЯ ДЛЯ УВЕЛИЧЕНИЯ УРОЖАЙНОСТИ

ПРИЛОЖЕНИЕ 2. СРЕДСТВА ЗАЩИТЫ ОТ ВРЕДИТЕЛЕЙ, РАЗРЕШЕННЫЕ К ПРИМЕНЕНИЮ НА ТЕРРИТОРИИ РФ (по состоянию на 2016г.)

ПРИЛОЖЕНИЕ 3. СРЕДСТВА ЗАЩИТЫ ОТ БОЛЕЗНЕЙ, РАЗРЕШЕННЫЕ К ПРИМЕНЕНИЮ НА ТЕРРИТОРИИ РФ (по состоянию на 2016г.)

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Основные вредители и болезни плодовых культур и системы мероприятий по ограничению их вредоносности

В книге обобщены результаты многолетних исследований автора, современные отечественные и мировые достижения по вопросам защиты плодовых культур от вредителей и болезней. Приведены описания морфологии, биологических и экологических особенностей развития вредных организмов, симптомов повреждения и поражения вредителями и болезнями, указан комплекс защитных мероприятий как на небольших приусадебных и фермерских хозяйствах, так и на промышленных насаждениях плодовых культур.

Подробно описаны системы мониторинга вредных организмов, сроки и методы их учета на каждой культуре, экономические пороги вредоносности (ЭПВ) в соответствующие периоды развития вредителей, система защитных мероприятий с подбором препаратов в борьбе с конкретными фитофагами и патогенами.

Книга иллюстрирована многочисленными оригинальными фотографиями, что поможет правильно идентифицировать вредные организмы и назначить необходимые защитные мероприятия. Издание предназначено для специалистов по защите растений, широкого круга работников, связанных с производством плодов, для фермеров, садоводов-любителей, студентов высших учебных заведений.

Зейналов Адалет Сехраб оглы – доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководства» (ФГБНУ ВСТИСП). Специалист в области защиты растений и паразитологии, эксперт РАН. Автор 190 научных работ, в том числе более 10 книг, монографий, методических указаний и рекомендаций, 5 патентов на изобретения по экологически чистым способам защиты садовых растений от вредных организмов и 1 авторского свидетельства. Его монография «Экологически безопасная защита основных ягодных культур от членистоногих фитофагов» и подготовленные с коллегами методические рекомендации «Ресурсосберегающие экологически обоснованные системы защиты ягодных культур от вредителей и болезней» были награждены дипломом Президиума Российской академии сельскохозяйственных наук за лучшую завершенную научную разработку 2013 года в области АПК России. Работает в ФГБНУ ВСТИСП с 1989 г. (ранее НИЗИСНП – Научно-исследовательский зональный институт садоводства Нечерноземной полосы).

Дата выпуска:	2018
Кол-во страниц:	200
Переплет:	Твердый
Плотность бумаги:	105 мел
Формат:	60×84/16 (145×200)

ГЛАВА 1. Вредители семечковых плодовых культур

Зеленая яблонная тля
Красногалловая, или серая яблонная тля
Обыкновенная грушевая медяница
Яблонная медяница
Кокциды Запятовидная щитовка
Ивовая щитовка
Акациевая ложнощитовка
Кленовый мучнистый червец
Яблонный цветоед
Короеды
Западный непарный короед
Многоядный непарный короед
Яблонная плодожорка
Яблонная горностаевая моль
Яблонная нижнесторонняя минирующая моль
Яблонная моль-малютка
Кольчатый шелкопряд
Боярышница
Зимняя пяденица
Яблонный плодовый пилильщик
Клещи – основные вредители семечковых плодовых культур
Красный плодовый (яблонный) клещ
Бурый плодовый клещ
Грушевый галловый клещ

ГЛАВА 2. Болезни семечковых плодовых культур

Парша яблони и груши
Мучнистая роса яблони
Монилиоз яблони и груши
Септориоз (белая пятнистость) листьев груши
Филлостиктоз (бурая пятнистость) листьев
Ржавчина
Черный рак яблони
Обыкновенный, или европейский, западный рак
Цитоспороз, или инфекционное усыхание семечковых культур
Млечный блеск
Бактериальный рак, или бактериальный некроз коры
Ожог плодовых деревьев

ГЛАВА 3. Вредители косточковых плодовых культур

Вишневая тля
Сливовая опыленная тля
Вишневый долгоносик
Плодовый заболонник
Морщинистый заболонник
Сливовая плодожорка
Вишневая побеговая моль
Вишневый слизистый пилильщик
Бледноногий вишневый пилильщик
Желтый сливовый плодовый пилильщик
Черный сливовый плодовый пилильщик
Сливовая толстоножка Вишневая муха
Четырехногие клещи – вредители косточковых культур

ГЛАВА 4. Болезни косточковых плодовых культур

Монилиоз (монилиальный ожог, серая плодовая гниль) косточковых
Кластероспориоз, или дырчатая пятнистость листьев косточковых
Коккомикоз вишни и черешни
Цитоспороз, или инфекционное усыхание косточковых культур
Гоммоз или камедетечение

ГЛАВА 5. Потенциально опасные и ограниченно распространенные вредные организмы плодовых культур

ГЛАВА 6. Системы мониторинга вредных организмов плодовых культур

Система мониторинга вредителей яблони
Система мониторинга вредителей груши
Система мониторинга вредителей косточковых культур

ГЛАВА 7. Системы защиты плодовых культур от вредителей и болезней

Система защиты яблони от вредителей и болезней
Система защиты груши от вредителей и болезней
Система защиты вишни и черешни от вредителей и болезней
Система защиты сливы от вредителей и болезней

ГЛАВА 8. Повышение эффективности химических обработок плодовых культур и органические удобрения для увеличения урожайности

Основные методы мониторинга болезней пшеницы. Часть 4

Интегрированная защита растений состоит из 4 блоков: мониторинг за вредными организмами, анализ информации, установочные и корректирующие мероприятия. При этом мониторинг должен обеспечивать регулярный сбор информации об абиотических элементах среды и популяциях вредных организмов (Гулий, Миняйло, 1989).

Продолжение. Начало читайте:

Для составления краткосрочного прогноза и своевременного проведения химической защиты посевов необходимо постоянно следить за распространением и динамикой развития болезней, особенно за ржавчиной, септориозом, пиренефорозом и другими. Для этого выбирают 2-3 типичных стационарных участка или поле и по основным фазам развития растений проводят наблюдения: в благоприятные для заражения растений и развития болезней погодные условия еженедельно или один раз за декаду. Общий мониторинг фитосанитарного состояния проводится в период массового распространения болезней, охватываются им посевы, размещенные по разным предшественникам, посеянные в разные сроки, сортовое разнообразие культур [рис. 39].

Глазомерную балловую оценку интенсивности развития болезней обычно проводят по следующей шкале:

0 балла – растения здоровые;

1 балл – слабое поражение органа или растения;

2 балла – умеренное поражение, сильно пораженных органов или растений нет;

3 балла – среднее поражение, у некоторых органов или растений – сильное;

4 балла – сильное поражение органов и гибель растений.

При равномерном распространении заболевания учет болезней можно проводить с любой стороны поле, отступив от края 25-50 м, заходя вглубь посева до 100-200 м, анализируется определенное количество растений или отбирают пробы стеблей или листьев по треугольнику или произвольно из 7-10 площадок, при неравномерном (очажном) – по диагонали поле.

Рисунок 39. Мониторинг болезней пшеницы в зависимости от фазы развития и химические мероприятия проводимые для защиты её посевов

При учете болезней устанавливают 2 показателя: распространение, или количество пораженных растений в посевах, интенсивность или степень развития.

Распространение болезней (Р) определяют по формуле:

Р = n × 100 / N,

где: N – общее количество растений в пробах;
n – количество больных растений.

Средневзвешенный процент распространения (Р0) болезни вычисляют по формуле:

где: ∑SP – сумма произведений площади полей на соответствующий процент распространения болезни;
S – обследованная площадь, га.

Интенсивность развития болезней (R) в процентах или баллах определяют по формуле:

где: ∑ab – сумма произведений пораженных растений на соответствующий им балл или процент поражения;
N – общее количество учетных растений в пробах;K – наивысший балл шкалы.

Для получения более точных результатов используются специальные шкалы, характеризующие интенсивность развития той или иной болезни. Ниже приводятся методы учета основных групп болезней пшеницы.

Мониторинг болезней с воздушно-капельной инфекцией
Виды ржавчины

Для своевременной обработки посевов фунгицидами с целью предотвращения больших потерь урожая зерна от ржавчины и других болезней с аэрогенной инфекцией нужно постоянно следить за их появлением и распространением. В районах, где возделывают озимую пшеницу и рожь, учет ржавчины проводят с осени при появлении 2-3 листьев. Весной после их отрастания (апрель-май) на 10 площадках поле анализируют не менее 100-200 растений (листьев) и определяют распространение ржавчины и степень ее развития. По основным фазам развития яровой пшеницы ведут регулярные учеты и устанавливают сроки заражения посевов, распространение видов ржавчины, септориоза и других. При обнаружении признаков болезни через каждые 25-50 шагов берут 5-10 проб по 10-15 растений или стеблей. В лаборатории проводят детальный анализ, учитывая количество больных растений, степень поражения листьев или стеблей отдельно для каждой болезни. Интенсивность или степень развития ржавчины определяют в процентах по шкалам: бурой – Русакова, желтой – по Маннерсу, стеблевой по видоизмененной Коббом-Петерсона [рис. 40 и 41] и результаты заносят в полевой журнал или компьютерную программу.

В зависимости от приуроченности возбудителей болезней к определенным органам в течение онтогенеза растений анализируются листья различного яруса, междоузлия стеблей и колос. Если учет проводится в период трубкования-колошения, то анализируются 2 листа нижнего и среднего яруса, в период налива зерна – верхние 2 листа, включая флаговый. Последний учет бурой и желтой ржавчины проводят в фазу молочно-восковой спелости, стеблевой – в период восковой или полной спелости зерна [табл. 90].

Наблюдения за урединиоспорами ржавчины в приземном слое воздуха, атмосфере и осадках. Для определения сроков заражения растений видами ржавчины нужно вести постоянный мониторинг за содержанием их спор в воздухе и выпадаемых осадках. Наиболее аспространенным и доступным методом анализа заноса спор воздушным потоком является улавливание их флюгерным приспособлением [рис. 42] или спороловушками типа ПЛС-71 и ПЛС-71М. Оно проводится в период возможного развития ржавчины на пшенице: от фазы кущения до начала налива зерна. Приборы устанавливают среди посевов, предметные стекла, смазанные вазелином или касторовым маслом, следует менять через 2-3 дня. На наклейку записывают название или географические координаты наблюдательного пункта, число и месяц. Анализируются в лаборатории при слабом увеличении микроскопа (8 × 20 или 10 × 20). При отсутствии спор или небольшом их количестве просматривается вся поверхность предметного стекла, при наличии 1-2 спор – 2/3; 3-4 спор – 1/2, 5-10 – 1/3; более 10 спор – 1/5 его поверхности. Определяется вид ржавчины, число спор учитывается в 10 полях зрения микроскопа, как при определении заспоренности семян телиоспорами твердой головни.

Рисунок 40. Шкалы для оценки степени пораженности листьев пшеницы ржавчиной: (а) Русакова – бурой ржавчины, (б) Маннерса – желтой ржавчины

Рисунок 41. Модифицированная Коббом шкала Петерсона (Peterson et all. 1965) для оценки степени пораженности листовой и стеблевой ржавчиной

Таблица 89. Основные органы для учета болезней пшеницы с воздушно-капельной инфекцией

Для получения данных о наличии спор ржавчины, оседающих с осадками, проводят анализ дождевой воды. Для этой цели применяют прибор, состоящий из воронки диаметром от 15 до 24 см, со стеклянной трубкой длиной 20-30 см и диаметром 44 мм. В нижней её части устанавливают микрофильтр, который пропускает воду, но задерживает споры грибов [рис. 43]. После каждого дождя анализируется содержание спор ржавчины и других патогенов на фильтре путем центрифугирования и микроскопирования осадков.

Количество урединиоспор на 1 м 2 площади рассчитывают по формуле:

где: N – количество спор на 1 м 2 , шт;
n – количество спор на всей поверхности фильтра, шт;
S – площадь верхней горизонтальной части воронки, см 2 .

Если в период стеблевания пшеницы в течение суток в воздухе и осадках улавливаются две и более спор ржавчины на 1 см2 и условия для заражения растений благоприятные, то следует ожидать массовую вспышку болезней через 7-10 суток. Возникновение эпифитотий ржавчины возможно при обнаружении 10-15 спор на 10 см2 в период колошения пшеницы.

Рисунок 42. Флюгер для улавливания спор ржавчины в воздухе Рисунок 43. Прибор для учета спор ржавчины в дождевой воде

Со дня обнаружения урединиоспор гриба в приземном слое воздуха необходимо постоянно следить за относительной влажностью, среднесуточной температурой и появлением первых урединий гриба на листьях и стеблях. Важное значения для заражения растений имеет наличие росы. Заражение пшеницы бурой ржавчиной при средней температуре от 10 до 15°С происходит при продолжительности росяного периода более 5 часов, от 16 до 20°С сокращается до 4 часа.

Скорость развития возбудителей ржавчины зависит от температуры воздуха. Время, необходимое для одной генерации гриба, можно определить по формуле:

где: n – продолжительность генерации, сутки;
С – сумма эффективных температур для развития одной генерации, °С;
Т – среднесуточная температура воздуха, °С;
t – нижний температурный порог развития грибов.

Сумма эффективных температур, т.е. среднесуточных, превышающих нижний порог развития возбудителя бурой ржавчины, составляет 85°С, стеблевой – 125, желтой – 171, нижние пороги – 1,9, –2 и –0,7°С соответственно (методические указания, 1981; 1982). Пользуясь специальными номограммами или моделями можно прогнозировать интенсивность поражения посевов пшеницы видами ржавчины к молочно-восковой спелости зерна и возможные потери урожая зерна, определить необходимость химической защиты посевов от болезни и оптимальные сроки ее проведения.

Идентификация урединиоспор возбудителей ржавчины. У стеблевой ржавчины они имеют эллипсоидальную форму и четкий контур из-за окрашенной оболочки, бурой и желтой ржавчины -шаровидные или округло-овальные, примерно одинакового размера. Оболочка урединиоспор желтой ржавчины бесцветная, 1-2 мкм толщины, покрыта очень мелкими шипиками и 10-12 ростковыми порами; у бурой ржавчины 1-2 мкм толщины, густо покрыты маленькими шипиками, с 8-10 ростковыми порами.

Пятнистости листьев, мучнистая роса

Распространение и степень развития видов септориоза, желтой пятнистости или пиренефороза учитывают одновременно с ржавчиной. Для определения степени пораженности листьев можно использовать унифицированную шкалу Джеймса показателями: 1, 5, 10, 25, 50 и 100% [рис. 44а], колосьев – 5, 10, 25 и 50% [рис. 44б].

В регионах, где возделывают озимую пшеницу, наблюдения за мучнистой росой проводят осенью, продолжают весной следующего года, на яровой пшенице – от стеблевания до колошения. Степень пораженности листьев и других органов определяют по видоизмененной шкале Э.Э. Гешеле [рис. 45].

Виды головни, корневые гнили и другие болезни

Виды головни учитывают в период восковой или полной спелости зерна при апробации посевов. Для этого по диагонали поля через равные расстояния (50-100 метров) проверяют на корню или отбирают для детального анализа 1000 стеблей (по 25-50 с каждой площадки), пыльную легко определить во время цветения пшеницы. При анализе апробационного снопа учитывают все виды головни.

Рисунок 44. Шкалы для оценки пораженности листьев (а) и колоса (б) пшеницы грибными пятнистостями

Рисунок 45. Шкалы СИММИТ для оценки реакции и степени пораженности пшеницы видами ржавчины

Корневые гнили. Учет пораженности пшеницы болезнью проводят в фазу 2-3 листьев и перед уборкой урожая: через каждые 25-50 метров берут 10 проб, вырывая с корнем 10-20 растений с каждой площадки. В лаборатории их анализируют, пораженность всходов определяют в баллах по шкале ВИЗР:

0 балла – признаки болезни отсутствуют;
0,1 балла –единичные штрихи на колеоптиле;
1 балл – слабое побурение колеоптиле;
2 балла – умеренное побурение колеоптиле;
3 балла – сильное побурение, проникающее под колеоптиле;
4 балла –погибший проросток.

В фазу восковой или полной спелости зерна проводят второй учет, пробы отбирают аналогично, как в фазу всходов, или можно использовать апробационные снопы. В лаборатории основание корня очищается от листьев, определяется степень развития болезни по 4-х балльной шкале [рис. 46].

0 балла – здоровые растения;
0-1 балл – у основания стебля или у его подземной части бурые штрихи или полосы, занимают до 1/5 части пораженного органа;
2 балла – коричневые полосы или пятна, охватывающие от 25 до 50% поверхности пораженного органа;
3 балла –сильное побурение первого стеблевого и подземного междоузлия;
3-4 балла – отсутствие продуктивных стеблей при наличии симптомов по баллу 3.

3-4 – При отборе проб растений на корневую гниль в 10 точках берут почву весом 1-2 кг, инфицированность её возбудителем болезни определяют по методике Ледингама и Чина (1955). Просеивают её через сито диаметром 1 мм, взвешивают 10 г и помещают в пробирку 20×200 мм, приливают 5 мл веретенного или другого минерального масла, 30 мл водопроводной воды. Закрытую резиновой пробкой пробирку помещают в горизонтальном положении на ротатор и взбалтывают с постоянной частотой в течение 10-15 мин. После отстаивания пробирки в течение 1-1,5 ч, капли эмульсии объемом 0,01 мм просматривают на предметном стекле под бинокуляром или микроскопом при увеличении 40-80 × в 10-кратной повторности. Соответствующим пересчетом определяют количество конидий в 1 г почвы.

Рисунок 46. Шкала для оценки степени пораженности нижнего междоузлия пшеницы корневой гнилью

Вирусные и бактериальные болезни. В период колошения – молочной спелости зерна по диагонали поля на 10 площадках подсчитывают общее количество растений на 1 погонном метре и пораженных вирусными болезнями. Степень их проявления определяют по шкале Г.М. Развязкиной:

0 балла – здоровые растения;
1 балл – слабое поражение, листья с симптомами мозаики;
2 балла – среднее поражение, на листьях признаки мозаики;
3 балла – сильное поражение, листья ярко мозаичные, растения карликовые;
4 балла – погибшие растения.

Распространению бактериальных болезней пшеницы определяют при мониторинге листовой ржавчины и септориоза. Для оценки степени их развития на листьях и колосковых пленках можно использовать шкалы, рекомендованные для учета пятнистостей.

Методы фитоэкспертизы семян, экономические пороги их зараженности

Как известно, семена являются источником и участвуют в передаче инфекций многих болезней растений. Основными патогенами пшеницы, передающимися семенами, являются возбудители пыльной, твердой и карликовой головни, септориоза, гельминтоспориозной (Bipolaris sorokiniana) и фузариозной (виды Fusarium) корневых гнилей и бактериоза. Кроме того, в период формирования, уборки и хранения семена заселяются многочисленными эпифитными и сапрофитными грибами, в т.ч.: Alternaria, Cladosporium Trichotecium и др., а также плесневыми – виды Penicillium, Aspergillus, Mucor. Последние интенсивно развиваются при высокой влажности семян (15-16%) и снижают полевую их всхожесть. Возбудители «черного зародыша» пшеницы грибы A. tenuies и A. alternatа. Первый вид существенно не влияет на посевные качества семян и технологические свойства муки в связи с его локализацией в плодовой оболочке, а второй проникает глубже, поражая зародыш и снижает всхожесть.

В связи с изложенным необходимо определение зараженности семян инфекционными зачатками возбудителей болезней. Они присутствуют в виде примесей к семенам: телиоспор головни, конидий грибов, клеток и спор бактерий. Наиболее распространенными методами фитоэкспертизы семян являются визуальный, центрифугирование, биологический, бактериологический и анатомический анализы. В отдельных случаях применяют серологический и люминесцентный методы (Наумова, 1970; Кривченко с соавт., 1971).

Контрольный анализ семян пшеницы на грибную и бактериальную инфекцию проводят районные и областные инспекции Министерства сельского хозяйства, при необходимости лаборатории научно-исследовательских институтов и опытных станций.

Визуальный осмотр проводится одновременно с анализом чистоты семенного материала. При этом устанавливают наличие в зерне примесей головневых мешочков и рожков спорыньи. Семена рассыпают на стекло тонким слоем и делят линейкой на 4 треугольника, из каждого отбирают по 100 зерен и по шкале А.Г. Тороповой определяют степень пораженности их «черным зародышем»:

0 балла – здоровые семена;
0,5 балла –следы окрашивания зародыша размером с точку;
1 балла – потемнение зародыша и окружающей ткани;
2 балла – потемнение охватывает за пределами зародыша до ½ поверхности зерна;
3 балла – то же более ½ поверхности зерна.

Рисунок 47. Схема фитоэкспертизы семян пшеницы на зараженность грибной и бактериальной инфекцией

Для анализа зараженности семян комплексом патогенов проводятся дополнительные анализы методами: на заспоренность твердой головней – центрифугирование, пыльной головней – гистологический, инфицированность септориозом и гельминтоспориозом – биологическим.

Путем обмывки и центрифугирование устанавливают заспоренность семян пшеницы телиоспорами наружных видов головни, а также конидиями грибов Helminthosporium, Fusarium, Alternaria, Septoria. Для этой цели из среднего образца отбирают 2 пробы по 100 зерен, их помещают в чистые пробирки, заливают 10 мл воды и взбалтывают. После этого воду сливают в специальные пробирки и центрифугируют в течение 5 минут при оборотах 1 000-1 500. Из пробирки сливают воду, осадок взмучивают, наносят каплю его на предметное стекло и просматривают под микроскопом в 10 поле зрения. Данные суммируют и определяют среднее количество спор головни для каждой пробы по формуле:

где: Х – число спор на 1 зерно;
А – среднее число спор на 1 поле зрения микроскопа;
К – постоянный коэффициент: произведение числа полей микроскопа, размещающихся на покровном стекле, умноженное на число капель в 0,5 мл.

Площадь поля зрения микроскопа определяют по формуле:

где: π – постоянное число, равное 3,14;
R – диаметр поле зрения микроскопа.

Диаметр поля зрения микроскопа измеряют посредством объективного микрометра при определенном увеличении, затем подсчитывают число делений в одном, которое умножают на величину деления.

Биологический метод. Из исходного образца семя отбирают по 50 зерен и анализируют их во влажной камере. Для этого на стерильное дно чашки Петри кладут 2-3 слоя фильтровальной бумаги или кружочки марли, увлажняют их стерильной водой. Для выявления внутренней инфекции семена предварительно дезинфицируют в 0,5% растворе перманганата калия (KMnO4) в течение 5 минут или 0,1% растворе формалина, затем промывают стерильной водой. Чашки Петри с высеянными семенами инкубируют в термостате при 20-25°С течение 5-7 суток. Затем их анализируют визуально или при слабом увеличении микроскопа.

Рисунок 48. Фитоэкспертиза семян пшеницы в стерильном песке (а) и на фильтровальной бумаге (б) для определения зараженности грибной инфекцией

Для анализа зараженности семян пшеницы гельминтоспориозной, альтернариозной и фузариозной инфекциями проращивают по 20-25 зерен в 4-5 – кратной повторности при температуре 25°С в чашках Петри на увлажненном песке или фильтровальной бумаге. На 7-е сутки просматривают их визуально, при наличии спороношения грибов при слабом увеличении микроскопа по морфологии конидии определяют видовой их состав.

Возбудители многих грибных и бактериальных болезней хорошо растут на искусственных питательных средах. Поэтому, для определения инфицированности семян и грибной или бактериальной инфекцией, идентификации возбудителей наряду с влажной камерой могут быть использованы синтетическая среда Чапека и картофельный агар.

Рисунок 49. Проращивание семян на бумажных рулонах для установления пораженности их грибной и бактериальной инфекцией

Рисунок 50. Колонии грибов Bipolaris sorokiniana (а), A. tenuies (б), Fusarium spp (в) на искусственной питательной среде

Гистологический метод применяется для определения зараженности семян пшеницы пыльной головней. Кипятят их в колбе в 3%-ном растворе КОН или NaOH (из расчета 100-150 мл раствора на (100-120 зерен), на ситах размером 5, 3 и 1 мм зародыши отделяют от эндосперма и тщательно промывают водопроводной водой. В течение 2-4 минут окрашивают их в 1%-ном растворе анилинового синего, приготовленного в 40-45% уксусной кислоте, затем зародыши промывают в молочной кислоте для удаления лишней краски. В этом растворе их можно оставить на 2-3 дня (Кривченко, 1985).

Серологический метод применяется для диагностики бактериальных болезней пшеницы. Капельный метод, разработанный М.С. Дуниным и Н.Н. Поповой, позволяет идентифицировать возбудителей черного и базального бактериоза пшеницы. Для этого на предметном стекле смешивают специальную сыворотку с чистой культурой бактерий. При положительной реакции выпадает осадок, заметный невооруженным глазом.

Люминесцентный анализ. Семена пшеницы раскладывают в один ряд на черной бумаге, затем их на расстоянии от 15 до 30 см помещают под ртутно-кварцевую лампу. При этом здоровые семена дают сине-голубую или сине-фиолетовую флуоресценцию, а зараженные пыльной головней – не флуоресцируют, имеют тусклый вид. При поражении семян грибами из родов гельминтоспориум, фузариум и патогенными бактериями наблюдается аналогичная реакция.

На основе анализа результатов многолетних экспериментальных исследований и обобщения литературных данных разработаны предельно допустимые показатели пораженности колосьев головней, инфицированности семян и зараженности почвы возбудителем коревой гнили [табл. 91].

При зараженности семян выше указанных показателей рекомендуется обязательное их протравливание. Минимальные индексы инфицированности берутся при возделывании восприимчивых сортов или неблагоприятной фитосанитарной ситуации, а максимальные – для сравнительно устойчивых сортов и при благоприятных для роста и развития растений погодных условий.

Таблица 91. Критические параметры инфицированности семян и почвы возбудителями болезней

https://www.agroliga.ru/press/books/
https://agrovesti.net/lib/tech/growing-cereals/osnovnye-metody-monitoringa-boleznej-pshenitsy-chast-4.html